朱军，赵希敏

（上海市宝山区中西医结合医院外科·上海201900）

【摘要】目的 建立大鼠失血性体免复苏模型，观察内放装总并（cistanche total glycosides，CTG）对缺血再灌注肾损伤的保护作用。方法 将SD大鼠随机分为3组：假手术组、实验组（休充复茶组），CTG处理组，每组各10只。实验组和CTG处理组建立肾缺血-再灌注模型，治疗组大鼠给于CTG 400mg／kg 腹腔注射，实验组和假手术组注射生理盐水，分刷检测各组血凯研含量、尿素氮含量、就抑素C以测定骨功能，流式细胞分析技术检测肾脏细胞调亡率；酶联免疫法（ELISA）检测大鼠肾组织X-染色体连锁调亡押制蛋白（Xlinkel inhibitor of apoptosis protein，XIAP）表达。结果 CTG组与实验组比较，血Cr．BUN和胱抑素C均明显降低（P＜0.01），肾脏细胞调亡减少（P＜0.05）．CTG可足著提高XIAP的表达（P＜0.05）。结论 肉苁蓉总普对大鼠缺血再灌注肾损伤具有保护作用，可能与促进XIAP的表选有关。

【关键词】骨；缺血再灌注损伤；肉苁蓉总苷；染色体连锁调亡抑制蛋白；细胞凋亡；大鼠

缺血再灌注（ischemia-reperfusion，1／R）损伤是失血性休克、严重创伤及肾移植、肾肿瘤手术等过程常见的肾功能损害的病理生理现象。研究表明细胞凋亡是1／R损伤所致的肾功能损伤的重要环节四。X-染色体连锁凋亡抑制蛋白（X-4inkedinhibitor of apoptosis protein，XIAP）是迄今发现的 最强的内源性调亡抑制因子之一口。有关XIAP在1／R损伤后肾组织的抗凋亡研究较少。肉苁蓉总苷（cistanche total glycosides，CTG）是从列当科 植物肉苁蓉中提取分离出来的苯乙醇苷类化合物，生物功能多样，有关它在1／R损伤后的肾保护作用的研究尚少。本研究通过建立大鼠失血性休克复苏模型，建立全身性I／R损伤模型，探讨肉苁蓉总苷预处理对1／R损伤肾脏的保护作用并探讨其可能的作用机制。

1 材料与方法

1.1 动物及分组

由上海中医药大学实验中心提供的清洁级健康雄性大鼠30只，体质量（320±30）g。随机分为3组：假手术组、实验组（休克复苏组）、CTG组，每组各10只。

1.2 主要试剂和仪器

肉苁蓉总苷（批号：20081516）购自浙江杭州杏辉天力药业有限公司：戊巴比妥钠、Hoechst 33258、碘化丙啶，购自美国 Sigma公司：鼠X染色体连锁凋亡抑制蛋白测定试剂盒（XIAP）、ELISA Kit购自上海科敏生物科技有限公司；酶标仪购自美国Thermo公司：多参数生理检测仪购自日本 NihonKohden公司：流式细胞仪 BDFACSAria 购自美国Becton-Dilkinson 公司：24G 套管针购自山东洁瑞医疗器械公司。

1.3 实验方法

1.3.1 动物模型的制备 SD大鼠实验前12h禁食，戊巴比妥钠（50mg／kg）腹腔注射麻醉，将大鼠仰卧位固定，左下腹部作3cm的切口，分离股动脉，置入24G的套管针，连接多参数生理检测仪，测得大鼠平均血压为（113±15）mmHg，20ml注射器肝素化接三通器放血，血压降至40mmHg（1mmHg＝0.133 kPa），认为休克开始，维持该血压90min，放血量为（13±3）ml，然后将注射器内的自体血缓慢回输，需要30mn左右，血压恢复至基础值的90％以上，认为复苏成功。将套管针拔出，结扎股动脉，缝合切口。待大鼠清醒后放回饲养笼观察，自由进食水。在复苏后24h用戊巴比妥钠（50mg／kg）腹腔注射麻醉，剖腹，下腔静脉采血5ml，立即处死大鼠，取出左右双侧肾脏备用。

1.3.2 用药方法 CTG处理组在大鼠放血前2h给予CTG，按400mg／kg的剂量注入腹腔。实验组放血前2h予3ml生理盐水腹腔注射：假手术组仅行麻醉、剖腹和分离股动脉置套管针以及缝合切口等，不行放血以及复苏，其余同实验组。

1.4 检测指标及方法

1.4.1 血BUN、Cr、胱抑素C含量的测定 其抑胱素C是一种肾小球滤过率变化的内源性标志物，当肾功能受损时，肾小球滤过率下降，胱抑素C在血液中浓度可增加10倍，胱抑素C的诊断准确性明显优于血清肌酐。血BUN、Cr、胱抑素C含量交本院检验科测定。

1.4.2 细胞凋亡率测定 流式细胞仪检测肾脏细胞凋亡率。取肾脏用刀片切碎，加少许PBS移入管中，加入0.3％胰蛋白酶在37℃水浴箱中消化，孵育20min，待试管内物质变浑浊即加2倍的PBS以终止消化，用300目尼龙网过滤，弃去杂质，以低温离心机离心，离心半径8cm，12 000 r／min，离心5min，弃去上清液，调细胞浓度为1～1.5x10／ml，取以上细胞悬液0.4ml，加入1.2 ml Hoechst 33258（10μl／ml），避光37℃水浴箱孵育，试管加盖，5min后加PBS漂洗，离心半径8cm，12000r／min，离心5min，弃去上清液，同法再漂洗1遍。加PI0.4ml，染色5min后上机检测肾脏正常细胞、坏死细胞和凋亡细胞的百分率。依据各类细胞对此两种染料的亲和力得知：仅有1着色的为死亡细胞，仅有Hoechst 33258着色的为调亡细胞，两者均不着色的为正常活细胞。

1.4.3 酶联免疫法（ELISA）检测大鼠肾组织内XIAP表达 取各组肾脏，用组织裂解液处理新鲜肾组织。低温离心机12000t／min离心5mim，取上清按XIAP ELISA Kit 试剂盒说明书操作，由上海交大丰核科技有限公司负责检测。

1.5 统计学处理

各组实验数据用±s表示，采用SPSS 17.0软件进行统计学分析，P＜0.05为差异有统计学意义。

2结 果

肾脏功能指标Cr、BUN和胱抑素C值3组间差异均有统计学意义（P＜0.01）：实验组较假手术组均明显升高（P＜0.01），说明大鼠肾脏1／R模型制备成功：CTG组与实验组比较，Cr、BUN和胱抑素C值均明显降低（P＜0.01）。肾脏细胞凋亡率：假手术组肾脏组织只有极少数细胞发生调亡，凋亡细胞占0.42％±0.08％，实验组细胞凋亡明显增多，占18.22％±5.32％（P＜0.01），CTG组与实验组比较，细胞凋亡数减少，为12.71％±3.81％（P＜0.01）。CTG对I／R损伤肾组织XIAP表达的影响：假手术组仅有较微弱的XIAP的表达，实验组XIAP表达显著增加，（P＜0.01），与实验组比较，CTG组可显著提高XIAP的表达（P＜0.05），见表1。

表1 各组大鼠肾脏功能指标Cr．BUN和胱抑素-C值

Tab.1 Renal function indexes in three groups

与假手术组相比：P＜0.01：与实验组相比，AP＜0.05．＊P＜0.01

3讨 论

缺血再灌注肾损伤的机制十分复杂，是多种因素作用下通过许多途径发生的病理过程，诸如钙离子超载、脂质过氧化损伤、细胞凋亡和坏死等，其中caspae 依赖的细胞凋亡是1／R肾脏损伤诱导的肾小管上皮细胞损坏的主要形式之一。凋亡抑制蛋白（inhibitor of apoptosis protein，IAP）家族是至 今发现的哺乳类细胞中唯一的内源性半胱天冬酶（caspuse）抑制物，能有效阻止细胞调亡的发生。XIAP是IAP家族中对 caspase 抑制作用最强的成员，可抑制多种病理刺激引起的细胞凋亡，对损伤器官起到保护作用目前肾1／R损伤动物模型的建立方法多为切除一侧肾脏，夹闭另一侧肾蒂或肾动脉，模拟肾移植的状态。本研究采用的是失血性休克／复苏模型，更加接近临床的创伤休克时出现的全身性缺血再灌注的病理生理过程，本实验中，SD大鼠的血BUN、Cr、胱抑素C量显著提高，肾功能严重受损，是较理想的研究I／R肾损伤等的动物模型。

CTG是中药肉苁蓉的重要药用成分，肉苁蓉，性温，味甘、咸，归肾、大肠经，始载于神农本草经。《本经》：主五劳七伤，补中，养五脏，强阴，益精气：《本草汇言》：肉苁蓉，养命门，滋肾气，补精血之药也。肉苁蓉在我国使用已有两千年，在历代增力配方中居第1位，在滋补配方中仅次于人参居第2位，研究表明肉苁蓉具有提高性功能，调节神经内分泌，提高机体免疫功能，抗氧化，促进物质代谢，保护缺血心肌等多种功能。作为肉苁蓉主要药用成分，CTG的作用是多方面的。在脑缺血再灌注模型研究发现，CTG能够降低缺血再灌注后脑组织的兴奋性氨基酸对SD大鼠脑组织起到保护。CTG对小鼠组织有抗氧化作用，对小鼠急性脑缺氧和小鼠心肌损伤有一定保护作用0。CTG能够显著改善帕金森模型小鼠的神经行为、抑制脑黑质多巴胺神经元的数量减少院。通过增强自由基清除酶活性、防止脂质过氧化、抑制β-淀粉样肽在脑内的沉积以及抑制脑细胞调亡，CTG显著提高β-淀粉样肽所致阿尔采末病小鼠的学习记忆能力。本研究显示，应用CTG预处理后，大鼠血BUN、Cr、胱抑素C含量显著下降，肾功能损害减轻，CTG 使得1／R 损伤肾组织中调亡抑制蛋白 XIAP增加，阻断细胞凋亡的发生，对损伤肾脏起到了保护作用。

【参考文献】

[1] Cassis P. Azzollini N.Solimi S. e al. Both datepotinalfa and carlamylated pevent kidncy graft dysfuntion due to ischemia mperfusion in ats 0]. Transplantation,2011.92:271-279.

[2] WetT,Stump M.Lodygenaky G. et ad.lack of X- linked inhibior of apoptosis protein leads to incmaned apoplosis and tissue loss following nemnaal brain injury 0].Asmre,2009.1(1):43-52.

[3] Xiaobing B.Huiming T.Deiven W.e al Multiple organ injuries and failres caused by shock and reperfusion D].J Trama,1996.40:135439.

[4] Padanilam BJ. Cell death indared by acute renal