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李琳琳 王晓雯 王雪飞 木胡牙提 堵年生
（新疆医学院 乌鲁木齐830054）
摘要 肉苁蓉总试（GCs）可明显增强小鼠红细胞SOD活性，降低血清MDA含量，提高肝，肾组织中DNA.RNA含量，能明显促进受“Co照射损伤后小鼠红细胞SOD活性及脾核酸含量的恢复，降低肝MDA含量，提示GC对核酸的保护作用及辐射防护作用与其抗脂质过氧化作用密切相关。
关键词 肉苁蓉总试 DNA RNA 抗脂质过氧化 辐射防护
肉苁蓉有补中益气，益精，壮阳之功效，在历代抗老延年古方中，出现的机率仅次于人参。近有文献报道，肉苁蓉可增强机体免疫功能；促进记忆，提高智能；调节神经系统，提高性功能及抗衰老等作用，肉苁蓉粗制剂可增强小鼠红细胞SOD活性；显著降低心肌脂褐质含量；提高阳虚动物DNA的合成能力，明显延长果蝇寿命，但对肉苁蓉总甙（GCs）的药理作用研究，国内外尚未见报道，本研究旨在探讨GCs对核酸的保护作用及辐射防护作用与抗脂质过氧化作用的关系。
1 材料和方法
1.1 药品与试剂 肉苁蓉总试，从北疆产盐生肉苁蓉 Cistanche salsa C.A.Mey.中提得，主要成分为苯乙醇甙类，提取方法按日本文献（公开特许公报（A）昭63-198627）进行，由本院药学系植化教研室堵年生教授提供。硫代巴比妥酸，上海试剂一厂生产；DNA.RNA标准品分别由上海市牛奶公司和中国科学院生物化学研究所提供，此二者均按定磷法进行了纯度测定。1.2 GCs的抗脂质过氧化作用 NIH 小鼠110只，体重（22.5±2.1）g，雌雄兼用，随机分为4组：对照组给生理盐水（NS）20mlkg-1.灌胃（ig）；GCs组．分别给GCs 62 5.125．250mg＊kg，g各18天，末次给药2h后，摘取眼球取血501供测红细胞中SOD活力；剩
余血制备血清，测血清MDA含量；速取心肝，脑，肾等脏器，用冰生理盐水冲洗，制备各组织匀浆，红细胞SOD抽提液按文献制备，DNA和RNA的抽提液制备：取心，肝，脑，肾脏器称重．剪碎放入碾钵中，加入2ml．15％的三氯醋酸，在冰水浴中磨成匀浆，移入离心管，再用2ml 15％的三氯醋酸冲洗碾钵，共3次，洗涤液全部移入离心管中，离心4000r＂min＇，10min，弃上清，沉淀中加入无水乙醇2ml混匀后，置90℃水浴中加热2min，冷却后离心，4000rmin＇．10min．弃上清．沉淀中加入8ml 5％的三氯醋酸混匀，放入90℃水浴中抽提15min，冷却后离心，4000r＊min＇，10min。上清液倒入10ml的容量瓶中，沉淀中加入1ml5％的三氯醋酸，混匀，离心，4000r＂min＇．5min，上清液再倒入10ml的容量瓶中，用蒸馏水定容，混匀，DNA和 RNA的抽提液制备完毕。生化指标测定：红细胞SOD活性用邻苯三酚自氧化法”；血清MDA 含量用TBA 显色法：DNA和RNA抽提液分别经二苯胺显色法及苔黑酚显色法测得各组织中DNA和RNA含量
1.3 GCs的抗辐射作用 NIH小鼠120只，体重（21.0±2.2）g，雌雄兼用，随机分为4组：正常组，NS 20mlkg共18天；其余90只鼠接受CoY射线1次全身照射，受照剂量为6Gy，随后分成损伤组：照射后立即给予NS20mlkgd：GCs治疗组：照射后分别给以125,250mg＊kg＇·d＇，各18天，各组末次给药2h后，按前述实验方法分别进行红细胞内SOD活性，肝脏MDA含量，肝，脾组织中 DNA.RNA 含量的测定，及肝，脾脏的组织形态学观察。所有数据用x土s表示，组间进行：检验处理.
2 结果
2.1 GCs的抗脂质过氧化作用
21.1 GCs对正常小鼠红细胞内SOD活性、血清 MDA 含量的影响 从表1可见GCs62 5mg＊kg组与对照组相比无差异（P＞0.05）．GCs125.250mg＇kg＇组均能显著增加红细胞内SOD活性（P＜0.01）降低血清MDA含量（P＜0.05）．
表1 GCs对正常小鼠红细胞内SOD活性。
血清MDA含量的影响
组别 | 剂量 | SOD | MDA | |
mgkg | Um | mmlml- | ||
对图 | 6 | 66 1±186.6 | 4.05±0.95 | |
GC | 62.5 | 6 | 87.1±134.3 | 4.03±0.92 |
125 | 8 | 77.9±176.32 | 3.39±0 98 | |
250 | 8 | 59 8±1909 | 3.46±1.019 |
法①工士：②对照组n＝20 GCs组n均＝30③与对照组比较P＜0.05 P＜0.01（下同）
21.2 GCs对正常小鼠各脏器DNA含量的影响 由表2可见各给药组与对照组相比，心、脑DNA 含量均无明显差异（P＞0.05）．GCs62.5mgkg ＇组对肝、肾DNA含量无影响；GCs125mg＊kg＇组和250mg＊kg 组肝脏中 DNA含量较对照组分别增加9.6％（P＜0.05），14.2％（P＜0.01）；肾脏中DNA含量较对照组分别增加15.4％，16.0％（P均＜0.01）
表2 GCs对正常小鼠各脏器DNA含量的影响
组别 | 剂量 | DNA Pg | /100mg | ||||||
mg'kg | 心 | 脑 | 肝 | 肾 | |||||
对照 | 72 2±13.3 | 53.7± | 4.1 | 9 | 6.1±17.0 | 141.6±207 | |||
GC | 62.5 | 73.7±14.2 | 58.7±2 | 0 0 | 9 | 6.4±10.2 | 146.2±209 | ||
125 | 72.2±14.6 | 58.1±1 | 66 | 10 | 5.3±10.6 | 163.4±222 | |||
250 | 73.4±12.5 | 63.3±1 | 8.6 | 10 | 9.7±17.8 | 164 3±192 | |||
21.3 GCs对正常小鼠各脏器RNA含量的影 | GCs 125,250mg＊kg＇组肝脏RNA含量较对照 | ||||||||
响 由表3可见各给药组与对照组相比，心、脑 | 组分别增加18.1％，26.2％（P均＜0.01）；肾脏 | ||||||||
RNA 含量均无明显差异（P＞005）．GCs | RNA 含量较对照组分别增加20.9％，25.4％ | ||||||||
组对肝、肾脏RNA 含量无影响： （P均＜001）．625mg*kg
表3 GCs对正常小鼠各脏器RNA含量的影响
剂量 | RNA P | g/100ng | |||
mg'kg* | 心 | 脑 | 肝 | 肾 | |
对照 | 76.1±17.9 | 81 2±17.3 | 253.5±56.7 | 133.4±17.9 | |
GC | 62.5 | 78.3±18.3 | 80 7±17.1 | 252 6±42.9 | 142.9±28.9 |
125 | 76.4±18.4 | 81.4±153 | 299.5±52.92 | 161.3±27.8 | |
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