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肉苁蓉提取物对H2O2致兔肾小管上皮细胞损伤的影响(一)

发布日期:2021-12-02 11:58:00

张健飞,管静,赵丹,杨晓琴,周英,俸婷婷

1.贵州大学药学院,贵州 贵阳 550025

2.贵州大学医学院,贵州 贵阳 550025:

3.贵州大学生命科学学院学院,贵州 贵阳 550025:

4.贵州大学酿酒与食品工程学院,贵州 贵阳 550025:

5.贵州省药食同源植物资源开发工程技术研究中心,贵州 贵阳 550025:

6.贵州省药食两用资源应用开发工程实验室,贵州 贵阳 550025)

微信图片_20170518115808.png

摘要:通过体外培养免肾小管上皮细胞,研究H2O2对细胞增殖作用及肉苁蓉提取物对H2O2致肾小管上皮细胞损伤的影响。通过细胞形态观察,采用MTT法测定HO2对兔肾小管上皮细胞增殖作用的影响及肉苁蓉水提,醇提物220200mgL-三个剂量组的保护作用,测定细胞LDH释放量,结果表明,随着HO,浓度的增加,形态改变的细胞数量逐渐增多,贴壁细胞数量逐渐减少,细胞增殖抑制率越大,细胞LDH释放量越多,呈浓度依赖性,肉苁蓉醇提物和水提物高浓度组能够显著降低H2O2对免肾小管上皮细胞增殖的抑制作用(P0.01),肉苁蓉醇提物和水提物的高、中、低剂量组均能使HO2作用后兔肾小管上皮细胞LDH释放量极显著低于模型组LDH的释放量(P0.01),结果呈浓度依赖性。HO,对兔肾小管上皮细胞增殖具有不同程度的影响,肉苁蓉对HO2致兔肾小管上皮细胞损伤具有保护作用。

关键词:肉苁蓉:兔肾小管上皮细胞:细胞损伤

中图分类号:R965.2 文献标识码:A

文章编号:1008-0457(2017)06-0044-05      国际DOI编码:10.15958/j.cnki.sdnyswsh.2017.06.008



前言

肉苁蓉又名疆芸、寸芸、苁蓉、查干告亚,为列当科植物肉苁蓉 Cistanche deserticola Y.C.Ma或管 花肉苁蓉 Cistanche tubulosa(Schenk)Wight的干 燥带鳞叶肉质茎。具有补肾阳、益精血、润肠通便的功效,传统用于肾阳不足、精血亏虚、阳痿不孕、腰膝酸软、筋骨无力、肠燥便秘,为历代使用频度最高的补肾阳药物。H2O2作为一种活性氧形式,具有强烈引发脂质过氧化的作用,几乎可与任何细胞成分发生反应,引起链式脂质过氧化反应,造成细胞的凋亡和功能失调2.。实验主要通过研究肉苁蓉提取物对H2O2致兔肾小管上皮细胞增殖抑制和损伤的影响,初步探讨其对肾小管上皮细胞的保护作用。

1 材料与方法

1.1 试验药物

肉苁蓉购自四川省川南药业有限公司(批号151201)。

1.2 动物

新西兰大白兔,雄性,20日龄,购自贵州省畜牧研究所实验基地,动物许可证号:SCXK(黔)2012-001.

1.3 试剂

DMEM/F-12(1:1),Gbico 公司:胎牛血清,浙江天杭生物科技有限公司:二甲亚砜(DMSO),北京鼎国昌盛生物技术有限公司:H2O2,四川金山制药有限公司:胰蛋白酶,Amresco 公司:噻唑蓝(MTT),Genview 公司;非放射性细胞毒性检测试剂盒,Promega公司:无水乙醇,天津富宇精细化工有限公司。

1.4 仪器

CO2培养箱,3111型,Thermo Fisher Seientifie: 酶标仪,1510型,Thermo Fisher Seientifie:超净工作台,SW-CJ-1FD,苏州净化设备有限公司:倒置荧光显微镜,宁波舜宇:旋转蒸发器,RE-52AA,上海亚荣生化仪器厂;冷冻干燥机,LGJ-12,北京松源

华兴科技发展有限公司。

1.5 方法

1.5.1 肉苁蓉提取物的制备 取肉苁蓉干药材粉碎,精密称取两份药粉各100g,分别加入10倍量蒸馏水和75%乙醇加热回流提取3次,第一次3h,第二次1.5h,第三次1h,合并3次滤液,减压浓缩至浸膏,计算提取物得膏率分别为水提物22.30%,醇提物21.70%,挥去残醇,冷冻干燥机制得肉苁蓉水、醇提取物,密封干燥避光保存待用。

1.5.2 细胞培养 参照赵丹等“所述方法构建肾小管上皮细胞模型,分离培养20日龄的兔原代肾小管上皮细胞,待细胞生长至铺满培养皿90%以上,胰酶消化。用含1%胎牛血清的DMEM/F-12完全培养基以每孔1.2x10个细胞接种于96孔板,37℃,5%CO2条件下培养。

1.5.3 H2O2致兔肾小管上皮细胞损伤模型的建立 参照1.5.2接种细胞,待细胞稳定培养48h后,采用H2O2进行损伤。设置实验组和空白对照组,每组设置4个复孔,重复三次。实验组:更换含有不同浓度H2O2的完全培养基,H2O2的浓度分别为550、500、450、400、350 μmol·L-,空白对照组:更换完全培养基,37℃,5%CO2条件下继续培养24h.镜检,采集图片。采用MTT 法测定H2O2作用后细胞的增殖情况,于490nm处测定吸光度值(OD值)。采用非放射性细胞毒性检测试剂盒测定H2O2作用后细胞LDH释放量的变化,LDH释放量(%)=上清液LDH量/(上清液LDH量+裂解液LDH量)x100%。

AO/EB荧光染色:分别取100μg/mL.AO溶液和100μg/mL.EB溶液各100μL,混匀后每孔加入10μL,立即置于倒置相差荧光显微镜上观察,5min内保持观察视野不变,分别在450±10nm的蓝光和532±10nm的绿光下采集图片,采用荧光采集系统进行荧光合成,获得荧光染色图片。

1.5.4 肉苁蓉提取物对H2O2致兔肾小管上皮细胞损伤的影响 按照1.5.2接种细胞,待细胞稳定培24h后,每孔加入含肉苁蓉提取物完全培养基200ul对细胞进行预保护培养24h.设置实验组,模型组及空白对照组,每组3个复孔,重复三次。实验组和模型组:更换含有400μmol·L-H2O2的完全培养基:空白对照组:为完全培养基。继续培养24h.采用MTT法测定细胞增殖情况,采用非放射性细胞毒性检测试剂盒测定细胞LDH释放量的改变。





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